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El tamaño de algunos órganos que conforman la planta varía de manera proporcional o isométrica con el crecimiento, lo cual facilita su evaluación y seguimiento con base en un mínimo de características. Otras estructuras presentan, bajo determinadas circunstancias, un patrón de crecimiento no armónico o anisométrico. Estas relaciones fueron evaluadas en la planta de arveja mediante cuatro ensayos, tres a campo abierto y uno bajo condiciones de invernadero, en ambientes de trópico alto andino. Como resultado, las hojas mostraron proporcionalidad isométrica en el tamaño de sus partes constitutivas (foliolos, pecíolo y raquis), mientras que las diferentes condiciones ambientales afectaron las relaciones de tamaño entre las hojas, los entrenudos y las vainas. Bajo invernadero, los entrenudos fueron más largos que a campo abierto para un mismo tamaño de hoja. Así mismo, las vainas de las plantas bajo invernadero fueron más pequeñas respecto de las plantas a campo abierto para una misma longitud de entrenudos. Estos resultados contribuyen a explicar parcialmente la forma como la planta distribuye los asimilados para formar estructuras y la influencia del ambiente en dichas relaciones morfológicas. El crecimiento isométrico de la hoja permitió establecer un modelo de predicción del área de la hoja compuesta de arveja con base en el área del primer par foliar y el número total de foliolos.

 

Alometría, Equilibrio funcional, Distribución de asimilados, Análisis de componentes principales, Modelos de Predicción del área foliar

Julio Ricardo Galindo, Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Agrosavia)

Investigador especialista, Centro de Investigación
Tibaitatá, Mosquera (Cundinamarca).

Jairo Clavijo, Universidad Nacional de Colombia

Profesor catedrático, Facultad de Agronomía.
Galindo, J. R., & Clavijo, J. (2007). Área de la hoja compuesta y variaciones de forma en los fitómeros de arveja (Pisum sativum L.) en respuesta a diferentes ambientes de Trópico Alto Andino. Ciencia & Tecnología Agropecuaria, 8(1), 44-51. https://doi.org/10.21930/rcta.vol8_num1_art:82

Agren, G. y O. Franklin, 2003. Root:shoot ratios, optimization and nitrogen productivity. Ann. Bot. 92: 795-800. https://doi.org/10.1093/aob/mcg203

Agronet, 2007. Producción nacional por producto: Arveja. En: http://www.agronet.gov.co/; consulta: julio de 2007.

Bucciarelli, B., J. Hanan, D. Palmquist y C.P. Vance, 2006. A standardized method for analysis of Medicago truncatula phenotypic development. Plant Phys. 142: 207-219. https://doi.org/10.1104/pp.106.082594

Enquist, B., 2002. Universal scaling in tree and vascular plant allometry: toward a general quantitative theory linking plant form and function from cells to ecosystems. Tree Phys. 2: 1045-1064. https://doi.org/10.1093/treephys/22.15-16.1045

Fioranim, F., G. Beemster, L. Bultynck y H. Lambers. 2000. Can meristematic activity determine variation in leaf size and elongation rate among four Poa species? A kinematic study. Plant Phys. 124: 845-855. https://doi.org/10.1104/pp.124.2.845

Galindo, R. y J. Clavijo. 2007. Modelos alométricos para estimar el área de los foliolos de arveja. Revista Corpoica 8(1). https://doi.org/10.21930/rcta.vol8_num1_art:81

Hansen, L.H. y C.R. Krueger. 1973. Effect of establishment meted, variety, and seeding rate on the production and quality of alfalfa under dryland and irrigation. Agron. J. 65: 755-759. https://doi.org/10.2134/agronj1973.00021962006500050024x

Hofmann, R.W., B.D. Campbell, D.W. Fountain, B.R. Jordan, D.H. Greer, D.Y. Hunt & C.L. Hunt. 2001. Multivariate analysis of intraspecific responses to UV-B radiation in white clover (Trifolium repens L.). Plant, Cell Environ. 24: 917-927. https://doi.org/10.1046/j.1365-3040.2001.00749.x

Hu, Y. y N.H. Chua, 2003. The Arabidopsis auxin-inducible gene argos controls lateral organ size. Plant Cell 15: 1951-1961. https://doi.org/10.1105/tpc.013557

Igathinathane, C., V.S. Prakash, U. Padma, G. Ravi y A.R. Womac. 2006. Interactive computer software development for leaf area measurement. Comp. Elec. Agric. 51: 1-16. https://doi.org/10.1016/j.compag.2005.10.003

Ilomaki, S., E. Nikinmaa y A. Makela, 2003. Crown rise due to competition drives biomass allocation in silver birch. Can. J. For. Res. 33: 2395. https://doi.org/10.1139/x03-164

Li, L., Q Yu, Y. Zheng, J. Wang, Q. Fang. 2006. Simulation the response of photosynthetic partitioning during vegetative growth in winter wheat to environmental factors. https://doi.org/10.1016/j.fcr.2005.06.003

Field Crops Research 96: 133-141. Libenson, S., V. Rodríguez, M. López, R. Sánchez y J. Casal, 2002. Low red to far-red ra tios reaching the stem reduce grain yield in sunflower. Crop Science 42: 1180-1185. https://doi.org/10.2135/cropsci2002.1180

Maliakal, S.K., K. McDonnell, S.A. Dudley y J. Schmitt, 1999. Effects of red to far-red ratio and plant density on biomass allocation and gas exchange in Impatiens capensis. Int. J. Plant Sci. 160: 723-733. https://doi.org/10.1086/314157

Ney B., C. Duthion y E. Fontaine. 1993. Timing of reproductive abortions in relation to cell division, water content, and growth of pea seeds. Crop Science 33: 267-70. https://doi.org/10.2135/cropsci1993.0011183X003300020010x

Nygren, P., S. Rebottaro y R. Chavarría, 1993. Application of the pipe model theory to non-destructive estimation of leaf biomass and leaf area of pruned agroforestry trees. Agroforestry Systems 23: 63 - 77. Consulta: mayo de 2007. https://doi.org/10.1007/BF00704851

Piper, J.K. 1992. Size structure and seed yield over 4 years in an experimental Cassia marilandica (Leguminosae) population. Can. J. Bot. 70:1324-1330. https://doi.org/10.1139/b92-166

Quereix, A., R.C. Dewar, J.P. Gaudillere, S. Dayau y C. Valancogne. 2001. Sink feedback regulation of photosynthesis in vines: measurement and a model. J. Exp. Bot. 52: 2313-2322. https://doi.org/10.1093/jexbot/52.365.2313

Silvertown, J. 1998. Plant phenotypic plasticity and non-cognitive behaviour. Trends Ecol. Evol. 13: 255-256. https://doi.org/10.1016/S0169-5347(98)01398-6

Thornley, J.H., 1998. Modelling shoot:root relations: the only way forward?. Ann. Bot. 81:165-171. https://doi.org/10.1006/anbo.1997.0529

Tsukaya, H. 2005. Leaf shape: genetic controls and environmental factors. Int. J. Devel. Biol. 49: 547-555. https://doi.org/10.1387/ijdb.041921ht

Volenec, J.J., J.H. Cherney y K.D. Johnson, 1987. Yield components, plant morphology, and forage quality of alfalfa as influenced by plant population. Crop Science 27: 321-326. https://doi.org/10.2135/cropsci1987.0011183X002700020040x

Weinig, C. 2002. Phytochrome photoreceptors mediate plasticity to light quality in flowers of the Brassicaceae. Am. J. Bot. 89: 230-235. https://doi.org/10.3732/ajb.89.2.230

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