Variation in the capture of Neoleucinodes elegantalis Guenée (Lepidoptera: Crambidae) males using commercial sex pheromones on three solanaceous hosts

Publicado
2017-08-31
Sección
Sanidad vegetal y protección de cultivos
  • Ana Elizabeth Díaz-Montilla
  • Harold Suárez-Barón
  • Gerardo Gallego-Sánchez
  • William Fernando Viera-Arroyo
  • Clara Inés Saldamando-Benjumea

Resumen

Neoleucinodes elegantalis Guenée (Lepidoptera: Crambidae) representa la plaga más perjudicial de la familia Solanaceae. Estudios actuales demostraron que la especie se diferenció en cuatro razas según la variación de los órganos genitales femeninos, la morfometría del ala y la secuencia del gen mitocondrial Citocromo Oxidasa1 (CO1). Se cuantificó el número de machos capturados en Colombia y Ecuador empleando trampas cebadas con dos feromonas sexuales: Neolegantol® y P228 sintetizadas a partir de la feromona natural de hembras recolectadas en plantaciones de Solanum lycopersicum L. en Venezuela. En Colombia, el número de machos capturados fue significativamente mayor con Neolegantol® que con P228, y este número fue significativamente mayor en S. lycopersicum, seguido por S. quitoense y S. betaceum. La red haplotípica obtenida con el gen CO1 produjo dos grupos principales: un clúster conformado por especímenes de S. lycopersicum y S. quitoense (ambas hospederas dieron origen a hembras con genital mediano) y otro de S. betaceum (con genitales femeninos de gran tamaño). El Neolegantol® también fue probado en Ecuador, pero las capturas fueron insignificantes. Los resultados sugieren que la composición o la concentración de la feromona, los biotipos hospederos y la ubicación geográfica son factores relevantes para monitorear las poblaciones de N. elegantalis. Otros estudios de la especie deben encaminarse a determinar la composición y concentración de la feromona entre los cuatro biotipos.

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Biografía del autor

Ana Elizabeth Díaz-Montilla

Investigadora PhD, Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica), Centro de Investigación Obonuco. Pasto, Colombia. 

Harold Suárez-Barón

Profesor de Biología Celular y Molecular, Universidad de Antioquia, Facultad de Ciencias Exactas y Naturales, Instituto de Biología. Medellín, Colombia. 

Gerardo Gallego-Sánchez

Jefe de Laboratorio de Biotecnología, Centro Internacional de Agricultura Tropical (CIAT). Cali, Colombia. 

William Fernando Viera-Arroyo

Coordinador Nacional de I+D Fruticultura, Instituto Nacional de Investigaciones Agropecuarias (Iniap). Quito, Ecuador.

Clara Inés Saldamando-Benjumea

Profesor titular, Universidad Nacional de Colombia sede Medellín, Escuela de Biociencias. Medellín, Colombia.

Citas

Arnal, E., Ramos, F., Suárez, Z., & González, E. (2006). Capturas del perforador del fruto del tomate mediante trampas con atrayente sexual sintético en plantaciones de tomate de árbol en Aragua y Miranda, Venezuela. Revista Digital Ceniap Hoy, 11. Recuperado de https://goo.gl/M4sAm3.
Badji, C. A., Eiras, A. E., Cabrera, A., & Jaffe, K. (2003). Avaliação do feromônio sexual de Neoleucinodes elegantalis Guenée (Lepidoptera: Crambidae). Neotropical Entomology, 32(2), 221-229.
Capps, H. W. (1948). Status of the Pyraustid moths of genus Leucinodes in the New World, with descriptions of new genera and species. Proceedings of the United States National Museum, 98(3223), 69-83. doi: https://doi.org/10.5479/si.00963801.98-3223.69.
Deng, J. Y., Wei, H. Y., Huang, Y. P., & Du, J. W. (2004). Enhancement of attraction to sex pheromones of Spodoptera exigua by volatile compounds produced by host plants. Journal of Chemical Ecology, 30(10), 2037-2045.
Díaz, A. E. (2013). Manejo integrado del gusano perforador del fruto del lulo y el tomate de árbol. Rionegro, Colombia: Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica).
Díaz, A. E., González, R., Solis, M. A., & Saldamando-Benjumea, C. I. (2015). Evidence of sexual selection in Neoleucinodes elegantalis (Lepidoptera: Crambidae): correlation of female moth genitalia and Solanaceae host fruit size. Annals of the Entomological Society of America, 108(3), 272-281.
Díaz, A. E., Solis, M. A., & Brochero, H. (2011). Distribución geográfica de Neoleucinodes elegantalis (Lepidoptera: Crambidae) en Colombia. Revista Colombiana de Entomología, 37(1), 71-76.
Díaz-Montilla, A. E., Suárez-Barón, H. G., Gallego-Sánchez, G., Saldamando-Benjumea, C. I., & Tohme, J. (2013). Geographic differentiation of Colombian Neoleucinodes elegantalis (Lepidoptera: Crambidae) haplotypes: evidence for Solanaceae host plant association and Holdridge life zones for genetic differentiation. Annals of the Entomological Society of America, 106(5), 586-597.
Díaz-Montilla, A. E., Gallego-Sánchez, G., Suárez-Barón, H. G., Cano-Calle, D., Arango-Isaza, R. E., Viera, W., & Saldamando-Benjumea, C. I. (in press). Neoleucinodes elegantalis (Guenée) Population Structure and Isolation by Distance in Central and South America Revealed with Cytochrome Oxidase I (CO1) Gene. Southwestern Entomologist.
Groot, A. T., Marr, M., Schölf, G., Lorenz, S., Svatos, A., & Heckel, D. G. (2008). Host strain specific sex pheromone variation in Spodoptera frugiperda. Frontiers in Zoology, 5(20). doi:10.1186/1742-9994-5-20.
Hall, T. A. (1999). BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symposium Series, 41, 95-98.
Hammer, Ø., Harper, D. A. T., & Ryan, P. D. (2001). PAST: Paleontological statistics software package for education and data analysis. Palaeontologia Electronica, 4(1), 1-9.
Harding, C. & Fleischer, S. (2000). Identifying non-targets from fall armyworm pheromone captures (Fact Sheet). Recuperado de Penn State College of Agricultural Sciences website: http://ento.psu.edu/extension/factsheets/armyworm-pheromone-captures.
Hrudová, E. (2003). The presence of non-target lepidopteran species in pheromone traps for fruit tortricid moths. Plant Protection Science, 39, 126-131.
Jaffe, K., Mirás, B., & Cabrera, A. (2007). Mate selection in the moth Neoleucinodes elegantalis: evidence for a supernormal chemical stimulus in sexual attraction. Animal Behavior, 73(4), 727-734.
Jurenka, R. (2004). Insect pheromone biosynthesis. En S. Schulz (Ed.), The chemistry of pheromones and other semiochemicals I. Topics in current chemistry (pp. 97-132). New York: Springer Berlin Heidelberg.
Kristensen, N. P. (Ed.). (1999). Lepidoptera, moths and butterflies, vol. 1: evolution, systematics, and biogeography. Berlin and New York: Walter de Gruyter.
Larkin, M. A., Blackshields, G., Brown, N. P., Chenna, R., McGettigan, P. A., McWilliam, H., ... Valentin, F. (2007). Clustal W and Clustal X version 2.0. Bioinformatics, 23(21), 2947-2948.
Librado, P., & Rozas, J. (2009). DnaSP V5. A software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics, 25(11), 1451-1452.
Light, D. M., Flath, R. A., Buttery, R. G., Zalom, F. G., Rice, R. E., Dickens, J. C., & Jang, E. B. (1993). Host-plant-green-leaf volatiles synergize the synthetic sex pheromones of the corn earworm and codling moth (Lepidoptera). Chemoecology, 4, 145–52.
Löfstedt, C. (1993). Moth pheromone genetics and evolution. Philosophical Transactions: Biological Sciences, 340(1292), 167-177.
Mirás, B., Issa, S., & Klaus, J. (1997). Diseño y evaluación de trampas cebadas con hembras vírgenes para la captura del perforador del fruto del tomate. Agronomía Tropical, 47(3), 315-330.
Obando, V. (2011). Variabilidad morfométrica de Neoleucinodes elegantalis (Guenée) (Lepidoptera: Crambidae): perforador de fruto de las solanáceas de importancia económica (Tesis de maestría). Universidad Nacional de Colombia, Medellín, Colombia.
Olsson, S. B., Kesevan, S., Groot, A. T., Dekker, T., Heckel, D. G., & Hansson, B. S. (2010). Ostrinia revisited: Evidence for sex linkage in European Corn Borer Ostrinia nubilalis (Hubner) pheromone reception. BMC Evolutionary Biology, 10, 285. doi: 10.1186/1471-2148-10-285.
Palacio-Cortés, A. M., Zarbin, P. H., Takiya, D. M., Bento, J. M., Guidolin, A. S., & Consoli, F. (2010). Geographic variation of sex pheromone and mitochondrial DNA in Diatraea saccharalis (Fab., 1794) (Lepidoptera, Crambidae). Journal of Insect Physiology, 56(11),1624-1630.
Paredes, J., Peralta, E. L., & Gómez, P. (2010). Gusano perforador de los frutos de naranjilla (Solanum quitoense Lam): identificación y biología. Revista Tecnológica Espol (RTE), 23(1), 27-32.
Sokal, R. R., & Rolhf, F. J. (1995). Biometry. New York: W. H. Freeman and Company.
Yang, Z., Bengtsson, M., & Witzgall, P. (2004). Host plant volatiles synergize response to sex pheromone in codling moth, Cydia pomonella. Journal of Chemical Ecology, 30, 619-629.
Wanner, K. W., Nichols, A. S., Allen, J. E., Bunger, P. L., Garczynski, S. F., Linn, C. E., Jr., ... Luetje, C. W. (2010). Sex pheromone receptor specificity in the European corn borer moth, Ostrinia nubilalis. PLoS ONE, 5(1), e8685. doi:10.1371/journal.pone.0008685.

Most read articles by the same author(s)