Contenido principal del artículo

El marchitamiento vascular ocasionado por el hongo Fusarium oxysporum se considera el principal limitante en la producción de uchuva (Physalis peruviana) en Colombia. Se han identificado genotipos de P. peruviana y la especie relacionada P. floridana con diferentes niveles de reacción a F. oxysporum. En el presente estudio, se evaluaron los genotipos con el fin de complementar el conocimiento de la diversidad citogenética en Physalis y el diseño de estrategias de hibridación como apoyo al mejoramiento del cultivo de la uchuva. Se determinó el número de cromosomas en células en división mitótica de ápices radicales de plantas cultivadas in vitro, para lo cual se estimó como hora mitótica promedio las 12:00 para P. peruviana, y las 10:00 para P. floridana. Se encontraron dotaciones cromosómicas de 2n = 4x = 48 y 2n = 2x = 24 para cada una de las dos especies. Adicionalmente, se realizó un análisis por citometría de flujo, en el cual se detectó variación en el contenido de ADN nuclear en P. peruviana con 2,33 pg para el genotipo 2n = 24 y entre 5,77 y 8,12 pg para los genotipos 2n = 48. En P. floridana el contenido de ADN fue 2,29 pg para el genotipo con número cromosómico 2n = 24 y 4,03 pg para el genotipo 2n = 48. Se encontró un efecto significativo (α = 0,01) del número de cromosomas sobre el contenido de ADN nuclear para las dos especies.

cariotipo, citometría de flujo, conteo cromosómico,

Sara A. Liberato G., Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica)

Bióloga. Corpoica. Mosquera, Cundinamarca.

Erika Sánchez-Betancourt2, Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica)

Bióloga. Corpoica. Mosquera, Cundinamarca.

Jorge H. Argüelles C.3,, Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica)

MSc. Estadística. Corpoica. Mosquera, Cundinamarca.

Carolina González A., Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica)

PhD. Biología. Corpoica. Mosquera, Cundinamarca.

Víctor M. Núñez Z., Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica)

MSc. Genética y Fitomejoramiento. Corpoica. Mosquera, Cundinamarca.
Liberato G., S. A., Sánchez-Betancourt2E., Argüelles C.3,J. H., González A., C., & Núñez Z., V. M. (2015). Citogenética de genotipos de uchuva, Physalis peruviana L., y Physalis floridana Rydb., con respuesta diferencial a Fusarium oxysporum. Ciencia & Tecnología Agropecuaria, 15(1), 51-61. https://doi.org/10.21930/rcta.vol15_num1_art:396

Agronet. 2014. En: http://www.agronet.gov.co/www/htm3b/ReportesAjax/Verreporte. aspx; Consulta: marzo de 2014.

Aramuganathan K, Earle ED. 1991. Estimation of nuclear DNA content of plants by flow cytometry. Plant Molecular Biology Reporter 9(3): 229-241. https://doi.org/10.1007/BF02672073

Bennett MD, Leitch I. 1995. Nuclear DNA amounts in angiosperms. Annals of Botany 76: 113-176. https://doi.org/10.1006/anbo.1995.1085

Berdugo J. 2012. Generación y caracterización molecular de progenies F1 de Physalis peruviana L. y P. floridana procedentes del cruce entre genotipos contrastantes por su respuesta de resistencia a Fusarium oxysporum (tesis de grado). Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia. Facultad de Ciencias Básicas. Escuela de Ciencias Biológicas. Tunja, Boyacá.

Bhojwani S, Dantu P. 2010. Haploid Plants. En: Davey MR, Anthony P. Plant Cell Culture: Essential Methods. Wiley - Blackwell. Chichester, p. 61-75. https://doi.org/10.1002/9780470686522.ch4

Bonilla M, Espinosa K, Posso A, Vásquez H, Muñoz J. 2008. Caracterización molecular de 43 accesiones de uchuva de seis departamentos de Colombia. Acta Agronómica 57 (2): 109-115.

Cavallini L, Natali L. 1991. Intraspecific variation of nuclear DNA content in plant species. Caryologia 44: 93-107. https://doi.org/10.1080/00087114.1991.10797023

Cong B, Barrero L, Tanksley S. (2008). Regulatory Change in YABBY-like transcription factor led to evolution of extreme fruit size during tomato domestication. Nature genetics 40(6): 800-804. https://doi.org/10.1038/ng.144

Cotes AM, Barrero LS, Rodríguez F, Zuluaga MV, Arévalo H. 2012. Bioprospección para el desarrollo del sector agropecuario de Colombia. Corpoica - Ministerio de Agricultura. Produmedios. Bogotá D.C. Colombia. 195 p. https://doi.org/10.21930/978-958-740-130-1

Dolezel J, Bartos J, Voglmayr H, Greilhuber J. 2003. Nuclear DNA content and genome size of trout and human. Cytometry A 51(2): 127-128. https://doi.org/10.1002/cyto.a.10013

Dolezel J, Greilhuber J, Lucretti S, Meister A, Lysak MA, Nardi L, Obermayer R. 1998. Plant genome size estimation by flow cytometry: interlaboratory comparison. Ann Bot 82(suppl A): 17-26. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.aob.a010312

Dolezel J, Greilhuber J, Suda J. 2007. Estimation of nuclear DNA content in plants using flow cytometry. Nature Protocols 2(9):2233-2244. https://doi.org/10.1038/nprot.2007.310

Galbraith DW, Harkins KR, Maddox JM, Ayres NM, Sharma DP, Firoozabady E. 1983. Rapid flow cytophotometric analysis of the cell cycle in intact plant tissues. Science 220: 1049 - 1051. https://doi.org/10.1126/science.220.4601.1049

Ganapathi A, Sudhakaran S, Kulothungan S. 1991. The diploid taxon in Indian natural populations of Physalis L. and its taxonomic significance. Cytologia 56(2):283-288. https://doi.org/10.1508/cytologia.56.283

Garzón-Martínez GA, Zhu I, Landsman D, Barrero LS, Mariño-Ramírez L. 2012. The Physalis peruviana leaf transcriptome: assembly, annotation and gene model prediction. BMC Genomics 13: 151. https://doi.org/10.1186/1471-2164-13-151

Germaná MA. 2009. Chapter 21 haploids and doubled haploids in fruit trees. En: Touraev A, Forster B, Mohan Jain S. Advances in Haploid Production in Higher Plants. Springer Netherlands, p. 241-263. https://doi.org/10.1007/978-1-4020-8854-4_21

González CA, Barrero LS. 2011. Estudio de la marchitez vascular de la uchuva para el mejoramiento genético del cultivo. Corpoica, MADR, Novacampo, Cámara de Comercio de Bogotá. Editorial Kimpres, 44 p.

Greilhulber J, Dolezel J, Lysa M, Bennett M. 2005. The origin, evolution and proposed stabilization of the terms 'Genome Size' and 'C-Value' to describe nuclear DNA contents. Annals of Botany 95: 255-260. https://doi.org/10.1093/aob/mci019

Gupta SK, Roy SK. 1985. Radiosensitivity of a diploid and a tetraploid species of Physalis. Genética Agraria 39(4): 357-366.

Herrera A. Fischer G. Chacón M. 2012. Evaluación agronómica de materiales de uchuva (Physalis peruviana L.) provenientes del centro y nororiente colombiano. Agronomía Colombiana 30 (1): 15-24.

Heslop-Harrison J, Schwarzacher T. 1996. Flow cytometry and chromosome sorting. En Fukui K, Nakayama S, eds. Plant chromosomes - Laboratory Methods. New York: CRC Press Inc.

Johnson OW, Utter FM, Fabinovitch PS. 1987. Interspecies differences in salmonid cellular DNA identified by flow cytometry. Copeia 4: 1001-1009. https://doi.org/10.2307/1445564

Lagos T, Vallejo F, Criollo H, Muñoz J. 2008. Biología reproductiva de la uchuva. Acta Agronómica 57(2): 81 - 87.

Lagos T. 2006. Biología reproductiva, citogenética, diversidad genética y heterosis en parentales de uvilla o uchuva Physalis peruviana L. Trabajo de grado. Universidad Nacional de Colombia. Palmira, Colombia, p. 44 - 67.

Laguado J. 2007. Aplicaciones de la Citometría de flujo en microbiología, veterinaria y agricultura. Rev. MVZ Córdoba 12 (2): 1077-1095. https://doi.org/10.21897/rmvz.430

Levan A, Freda K, Sandberg A. 1964. Nomenclature for Centromeric Position of Chromosomes. Hereditas 52: 201-220. https://doi.org/10.1111/j.1601-5223.1964.tb01953.x

Lou Q, Iovene M, Spooner DM, Buell R, Jiang J. 2010. Evolution of chromosome 6 of Solanum species revealed by comparative fluorescence in situ hybridization mapping. Chromosoma 119: 435-442. https://doi.org/10.1007/s00412-010-0269-6

Mejía VI. 2009. Número cromosómico de siete especies del Género Mimosa (leguminosa). Universidad Autónoma Metropolitana Seminario de Investigación. En:http://148.206.53.231/UAMI10209.pdf; consulta: agosto 2011.

Menzel MY. 1951. The Cytotaxonomy and Genetics of Physalis. Proccedings of the American Phylosophycal Society 95: 132-183.

Moriconi D, Rush M, Flórez H. 1990. Tomatillo: una cosecha vegetal potencial para Luisiana. Avances en cosechas nuevas. Prensa de la Madera, Portland. p. 407-413.

Murashige T, Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures.Physiology Plantarum 15 (479): 15-19. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x

Ortiz R, Ulburghs F, Okoro JU. 1998. Variación estacional de la fertilidad aparente de las manchas y de la producción de polen 2n en plátanos y bananos. Hortscience 33(1): 146-148.

Poggio L, Naranjo C. 2004. Citogenética. En: Echenique V, Rubinstein C, Mroginski L. Biotecnología y mejoramiento vegetal. Buenos Aires, Argentina. Ediciones INTA, p 69-79.

Pozzobon MT, Schifino-Wittmann MT, De Bem Bianchetti L. 2006. Chromosome numbers in wild and semidomesticated Brazilian Capsicum L. (Solanaceae) species: do x = 12 and x = 13 represent two evolutionary lines? Botanical Journal of the Linnean Society 151: 259-269. https://doi.org/10.1111/j.1095-8339.2006.00503.x

Price HJ. 1988. Nuclear DNA variation among higher plants. Ann. Missouri Bot. Gard. 75: 1248 - 1257. https://doi.org/10.2307/2399283

Pulido VC. 2010. Evaluación de la resistencia y susceptibilidad de genotipos élite de germoplasma de uchuva (Physalis peruviana L.) al hongo Fusarium oxysporum Schltdl. Trabajo de grado. Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia. Tunja-Colombia, p.175.

Rodríguez N, Bueno M. 2006. Estudio de la diversidad citogenética de Physalis peruviana L. (Solanaceae). Acta Biológica Colombiana 11(2): 75-85.

Serrato M, Hernandez M, Savidan Y, Barcenas N. 2000. Determinación de la ploidía en progenies de Tagetes spp. mediante citómetro de flujo. Agrociencia 34(6): 735-740.

Simbaqueba J, Sánchez P, Sánchez E, Núñez Zarantes VM, Chacón MI, Barrero LS, Mariño-Ramírez L. 2011. Development and Characterization of Microsatellite Markers for the Cape Gooseberry Physalis peruviana. PloS one 6(10): e26719. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0026719

The Potato Genome Sequencing Consortium. 2011. Genome sequence and analysis of the tuber crop potato. Nature475: 189-195. https://doi.org/10.1038/nature10158

The Tomato Genome Sequencing Consortium. 2012. The tomato genome sequence provides insights into fleshy fruit evolution. Nature 485: 635-641. https://doi.org/10.1038/nature11119

Thompson J, Cunningham B, Segraves K, Althoff D, Wagner D. 1997. Plant polyploidy and plant/insect interactions. The American Naturalist 150(6):730 - 743. https://doi.org/10.1086/286091

Tiersch T, Chandler R, Wachtel S, Elias S. 1989. Reference standards for flow cytometry an application in comparative studies of nuclear DNA content. Cytometry 10:706 - 710. https://doi.org/10.1002/cyto.990100606

Trillos O, Cotes J, Medina C, Lobo M, Navas A. 2008. Caracterización morfológica de cuarenta y seis accesiones de uchuva (Physalis peruviana L.), en Antioquia (Colombia). Rev. Bras. Frutic 30(3): 708-715. https://doi.org/10.1590/S0100-29452008000300025

Vilmorin Simonet. 1928. Recherches sur le nombre des chromosomes chez les solanées. Internatl. Kong. Vererbungswiss, Verhandl 2: 1520-1536.

Vilmorin Simonet. 1932. Citado por Menzel 1951. The Cytotaxonomy and Genetics of Physalis. Proc Am Phylos Soc. 95:132-183.

Yamamoto K, Sakai K. 1932. On the chromosome number in some Solanaceae. Jap. J. Genet. 8:27-33. https://doi.org/10.1266/jjg.8.27

Descargas

La descarga de datos todavía no está disponible.

Metricas alternativas PLUMX

Metricas

Cargando métricas ...

Detalles del artículo

<