Evaluación in vitro de fungicidas comerciales para el control de Colletotrichum spp., en mora de castilla

Publicado
2013-02-10
Sección
Sanidad vegetal y protección de cultivos

Palabras clave

control químico; enfermedades de las plantas; extractos vegetales; Rubus glaucus Benth; Trichoderma spp
  • Viviana Gaviria-Hernández Medellín, Colombia
  • Luis Fernando Patiño-Hoyos Politécnico Jaime Isaza Cadavid
  • Alegría Saldarriaga-Cardona Corpoica C.I. La Selva

Resumen

Se evaluó la eficiencia in vitro de cinco fungicidas de síntesis química, tres extractos vegetales y tres productos a base de biocontroladores, mediante las variables porcentaje de inhibición del crecimiento micelial y porcentaje de inhibición de la biomasa de Colletotrichum gloeosporioides cepa 52 y Colletotrichum acutatum cepa 168. En el grupo de los productos de síntesis química, los mejores resultados en la inhibición del crecimiento micelial en ambas cepas, se obtuvo con hidróxido de cobre y difenoconazol, con 100% de inhibición. En cuanto a inhibición de la biomasa, los productos con mayor porcentaje de efecto inhibitorio en C. gloeosporioides fueron: difenoconazol (100%) y benomil (93% a 99%); en C. acutatum fueron: difenoconazol (100%) y azoxystrobin (91% a 97%). Respecto a los extractos vegetales, el extracto a base de Citrus sinensis y C. grandis presentó 100% de inhibición tanto del crecimiento micelial como de la biomasa, siendo el más efectivo en el control de ambas cepas del hongo. En el grupo de los biocontroladores, el porcentaje de inhibición del crecimiento micelial de los productos a base de Trichoderma lignorum y T. harzianum osciló entre 61% y 65% para C. gloeosporioides, y entre 77% y 79% para C. acutatum, considerados dentro del grupo de los biocontroladores como los más eficientes en el control in vitro de las cepas 52 y 168 de Colletotrichum spp.

Descargas

No hay datos de descargas disponibles

Biografía del autor

Viviana Gaviria-Hernández, Medellín, Colombia
Ing. Agropecuaria
Luis Fernando Patiño-Hoyos, Politécnico Jaime Isaza Cadavid
I.A. MSc. Docente-investigador
Alegría Saldarriaga-Cardona, Corpoica C.I. La Selva
I.A. MSc. Fitopatología. Investigadora Agrícola
¿Cómo citar?
GAVIRIA-HERNÁNDEZ, Viviana; PATIÑO-HOYOS, Luis Fernando; SALDARRIAGA-CARDONA, Alegría. Evaluación in vitro de fungicidas comerciales para el control de Colletotrichum spp., en mora de castilla. Corpoica Ciencia y Tecnología Agropecuaria, [S.l.], v. 14, n. 1, p. 67-75, feb. 2013. ISSN 2500-5308. Disponible en: <http://revista.corpoica.org.co/index.php/revista/article/view/344>. Fecha de acceso: 23 oct. 2017 doi: https://doi.org/10.21930/rcta.vol14_num1_art:344.

Citas

Agrios G. 2005. Plant Pathology. 5th edition. New York. Academic
Press, 922 p.
Afanador L, Álvarez E, Mejía J. 2009. Especies de Colletotrichum
causantes de la antracnosis de mora de castilla (Rubus glaucus
Benth) en Colombia. Memorias del XXIX Congreso Nacional
Fitopatología y Ciencias Afines –ASCOLFI-. Medellín, Editorial
ASCOLFI, p. 107–108.

Arauz L. 2000. Mango Anthracnose: Economic impact and current
options for integrated management. En: Plant Disease 86
(6):600–611. Consulta: agosto de 2010. ttp://apsjournals.apsnet.
org/doi/pdf/10.1094/PDIS.2000.84.6.600;

Bailey JA, Jeger MJ. 1992. Colletrotrichum: Biology, Pathology and
control. United Kingdom, British Society for Plant Pathology,
388 p.

Botero M. 2001. Interacción biológica de microorganismos relacionados
con Colletotrichum gloeosporioides (Penz.) Penz y Sacc.,
agente causal de la antracnosis en tomate de árbol (Solanum
betaceae (Cav.) Sendt). Trabajo de grado para optar al título de
Magister en Fitopatología. Manizales, Universidad de Caldas,
183 p.

Botero M, Ríos G, Franco G, Romero M, Pérez J, Morales E, Gallego
J, Echeverri I. 2002. Identificación y espacialización de enfermedades
asociadas a los cultivos de mora (Rubus glaucus Benth) en
el eje cafetero. En: Memorias del Cuarto Seminario Nacional de
Frutales de Clima Frío Moderado. Medellín, Corpoica y Universidad
Pontificia Bolivariana, p. 87-99.

Bravo N. 1996. Efecto in vitro de Bacillus sp., sobre el crecimiento,
esporulación y germinación de conidias y esporas de nueve
hongos. Fitopatología Colombiana 17 (2): 62-72.

De Los Santos B, Romero F. 2002. Effect of different fungicides
in the control of Colletotrichum acutatum, causal agent of
anthracnose crown rot in strawberry plants. Crop Protection.
21:11–15.

Echeverri L, Echeverri C, Navarro R, Gaviria B. 2007. Evaluación
de fungicidas cúpricos para el control de antracnosis
(Colletotrichum gloeosporioides) del tomate de árbol en el municipio
de Rionegro. Revista Universidad Católica de Oriente (24):99-
108.

Freeman S, Minz D, Kolesnik I, Barbul O, Zveibil A, Maymon M,
Nitzani Y, Kirshner B, Rav-David D, Bilu A, Dag A, Shafir S,
Elad Y. 2004. European Journal of Plant Pathology 110:361–
370.