Levaduras: probióticos y prebióticos que mejoran la producción animal


Palabras clave

Levaduras; Mananos; Antibióticos; Crecimiento; Monogástricos
  • Marilce Castro CORPOICA
  • Fernando Rodríguez CORPOICA


A fin de reducir el uso indiscriminado de antibióticos en la producción animal, se ha explorado el uso de diversas alternativas entre las que se encuentran probióticos, prebióticos y simbióticos los cuales representan un avance terapéutico potencialmen­te significativo y seguro. Los probióticos son microorganismos vivos que agregarse como suplemento en la dieta, favorecen la digestión y ayudan al mantenimiento del equilibrio de la flora microbiana en el intestino. Los prebióticos son ingredientes no digeribles de la dieta que estimulan el crecimiento o la actividad de uno o más tipos de bacterias benéficas en el colon. Los simbióticos combinan en sus formulaciones principios prebióticos y probióticos que actúan sinérgicamente. Estos productos al ser suministrados directamente a los animales mejoran su metabolismo, salud y produc­ción. Entre los probióticos se cuentan las levaduras que inducen efectos positivos en términos de desempeño productivo en especies monogástricas, pero no pueden colo­nizar el tracto digestivo. En monogástricos los principales efectos de la suplementación con levaduras y sus derivados (mananos) son la estimulación de las disacaridasas de las microvellosidades, el efecto antiadhesivo frente a patógenos, la estimulación de la inmunidad no específica, la inhibición de la acción tóxica y el efecto antagonista frente a microorganismos patógenos. Por otra parte, las enzimas, minerales, vitaminas y otros nutrientes o factores de crecimiento que producen las levaduras inducen respuestas benéficas en la producción animal. Por todo esto los probióticos, prebióticos y sim­bióticos ofrecen la posibilidad de mantener el crecimiento de animales alimentados con dietas sin antibióticos y bajo condiciones de estrés. Esta revisión versa sobre los mecanismos mediante los cuales las levaduras y sus biomoléculas derivadas afectan de manera positiva los componentes celulares, tejidos y sistemas de los animales, lo cual tiene influencia sobre los niveles de producción y la salud del huésped.




No hay datos de descargas disponibles

Biografía del autor

Marilce Castro, CORPOICA
Investigadora, Programa Nacional de Fisiología y Nutrición Animal, Laboratorio de Microbiología Molecular, C.I. Tibaitatá.
Fernando Rodríguez, CORPOICA
Investigador PhD, Programa Nacional de Fisiología y Nutrición Animal, Laboratorio de Microbiología Molecular, C.I. Tibaitatá.
¿Cómo citar?
CASTRO, Marilce; RODRÍGUEZ, Fernando. Levaduras: probióticos y prebióticos que mejoran la producción animal. Corpoica Ciencia y Tecnología Agropecuaria, [S.l.], v. 6, n. 1, p. 26-38, june 2005. ISSN 2500-5308. Disponible en: <http://revista.corpoica.org.co/index.php/revista/article/view/33>. Fecha de acceso: 23 oct. 2017 doi: https://doi.org/10.21930/rcta.vol6_num1_art:33.


Aarestrup, F.M., Bager, F., Jensen, N.E., Madsen, M., Meyling, A. y Wegener, H.C. 1998. Resistance to antimicrobial agents used for animal therapy in pathogenic, zoonotic and indicator bacteria isolated from different food animals in Denmark: a baseline study for the Danish Integrated Antimicrobial Resistance Monitoring Programme (DANMAP). APMIS. 106(8): 745–770.

Adeola, O., Lawrence, B.V., Sutton, A.L. y Cline. T.R. 1995. Phytase-induced changes in mineral utilization in zinc-supplemented diets for pigs. J. Anim. Sci. 73: 3384−3391.

Albrecht, H., y Schutte, A. 1999. Homeopathy versus antibiotics in metaphylaxis of infectious diseases: a clinical study in pig fattening and its significance to consumers. Altern Therap Health Med. 5(5): 64–68.

Ammann, A.J. y Stiehm, E.R. 1966. Immune globulin levels in colostrum and breast milk, and serum from formula- and breast-fed newborns. Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 122: 1098-1102.

Anadon, A. y Martínez-Larrañaga, M.R. 1999. Residues of antimicrobial drugs and feed additives in animal products: regulatory aspects. Livestock Production Science 59: 183–198.

Anderson, R.A. 1987. Chromium. In: W. Mertz (Ed.) Trace Elements in Human and Animal Nutrition. Academic Press, New York. Vol. 1. pp: 225-244.

Anderson, R.A., Bryden, N.A., Polansky, M.M. y Gautschi, K. 1996. Dietary chromium effects on tissue chromium concentrations and chromium absorption in rats, J. Trace Elem. Exptl. Med, 9: 11-25.

Anderson, D.B., Mccracken, V.J., Aminov, R.I., Simpson, J.M., Mackie, R.I., Verstegen, M.W.A. y Gaskins, H.R. 1999. Gut microbiology and growth-promoting antibiotics in swine. Pig News Info. 20: 115N–122N.

Auclair, E. 2000. Yeast as an example of the mode of action of probiotic in monogastric and ruminant species. Improving Safety: from Feed to Food. Feed manufacturing in the Mediterranean region. Brufau J editors. Zaragoza. Spain., pp: 45-53.

Backstrom, L. 1973. Environment and health in piglet production. A field study of incidences and correlations. Acta Vet. Scand. Suppl., 41: 1-240.

Backstrom, L. 1999. Sweden’s ban on antimicrobial feed additives misunderstood. Feedstuffs. (November 22): 8-20.
Bedford, M.R. y Schulze, H. 1998. Exogenous enzymes for pigs and poultry. Nutr Res Rev. 11(1): 91–114.

Behne, D., Kyriakopoulos, A., Meinhold, H. y Kohrle, J. 1990. Identification of type I iodothyronine 5’-deiodinase as a selenoenzyme. Biophys. Res. Comm. 173: 1143-1149.

Bekaert, H., Moermans, R. y Eeckhout, W. 1996. Influence d’une culture de levure vivante (Levucell SB2) dans un aliment pour porcelets sevrés sur les performances zootechniques et sur la fréquence des diarrhées. Annales de Zootechnie. 45: 369–376.

Blecha, F. y Charley, B. 1990. Rationale for using immunopotentiators in domestic food animals. In: F. Blecha and B. Charley (Ed.) Immunomodulation in Domestic Food Animals. Academic Press, San Diego, CA., pp 3-19.

Boddy, A.V., Elmer, G.W., Mc Farland, L.V. y Levy, R.H. 1991. Influence of antibiotics on the recovery and kinetics of Saccharomyces boulardii in rats. Pharm. Res., 8(6): 796-800.

Brugier, G. y Patte, F. 1975. Antagonisme in vitro entre l’ultra levure et différents germes bactériens. Médecin de Paris, 45: 61-66.
Buts, J.P., Bernasconi, P., Valrman, J.P. y Dive, C. 1990. Stimulation of secretory IgA and secretory component of immunoglobulins in small intestine of rats treated with Saccharomyces boulardi. Dig. Dis. Sci., 35: 251-256.

Buts, J.P., Bernasconi, P., Van Craynest, M.P., Maldague, P. y Meyer, R. 1986. Response of human and rats small intestinal mucosa to oral administration of Saccharomyces boulardii. Pediatr. Res., 20(2): 192-196.

Buts, J.P., Keyser, N., y Reademaeker, L. 1994. Saccharomyces boulardii enhances rat intestinal enzyme expression by endoluminal release of polyamines. Pediatr. Res., 36: 522-527.

Caduff, L. 2002. Growth Hormones and Beyond. Eidgenössische Technische Hochschule Zürich (ETH Zentrum), Swiss Federal Institute of Technology Zurich. Center for International Studies (CIS). Working Paper 8-2002., pp: 1-35.

Campbell, R.G. 1998. Chromium and its role in pig production. In: Biotechnology in the Feed Industry. (T. P. Lyons and K. A Jacques, eds.). Nottingham University Press. Nottingham, UK., pp: 229-237.

Castagliulo, I., Lacant, T.,Nikulassan,S.T. y Pothoulakis, C. 1996. Saccharomyces boulardii protease inhibits Clostridium difficile toxin A effects in the rat ileum. Infect. Immun., 64(2): 5225-5232.

Cerchiari, E. 2000. Active matrix technology making more of acids. Pig Progr. 16(4): 34–35.

Close, W.H. 1999. Organic minerals for pigs: an update. In: Biotechnology in the Feed Industry. Nottingham University Press, Nottingham., pp: 51-60.

Close, W.H. 2000. Producing Pigs without Antibiotic Growth Promoters. Advances in Pork Production. Volume 11, pp: 47-56.

Cole, N.A., Purdy, C.W. y Hutcheson, D.P. 1992. Influence of yeast culture on feeder calves and lambs. J. Anim. Sci. 70:1682–1690.

Collins, M.D. y Gibson, G.R. 1999. Probiotics, prebiotics, and synbiotics: approaches for modulating the microbial ecology of the gut. Am. J. Clin. Nutr. 69 (suppl): 1052S–1057S.

Commission of the European Communities. (1991). The rules governing medicinal products in the European Community, vol. VI. ECSC-EEC-EAEC, Brussels–Luxembourg.

Committee on Drug Use in Food Animals. 1999. Panel on Animal Health, Food Safety, and Public Health.. The Use of Drugs in Food Animals: Benefits and Risks. National Research Council (ed.). National Academy Press, Washington, USA.

Corthier, G., Dubos, F. y Ducluzeau, R. 1986. Prevention of Clostridium difficile mortality in gnotobiotic mice by Saccharomyces boulardii. Can. J. Microbiol., 32: 894-896.

Cromwell, G. 2000. Why and How Antibiotics are used in Swine Production. In Proceedings of the Pork Industry Conference. Addressing Issues of Antibiotic Use in Livestock Production. October 16-17. Department of Animal Science. University of Illinois. Urbana. Illinois.

Cromwell, G.L., Coffey, R.D., Parker, G.R., Monegue, H.J. y Randolph, J.H. 1995. Efficacy of a recombinant-derived phytase in improving the bioavailability of phosphorus in corn-soybean meal diets for pigs. J. Anim. Sci. 73: 2000−2008.
Cuarón, P. 1999. Live yeast use in growing and finishing swine. Development of a study model. In: Proc. 3rd SAF-AGRI Symposium on Biotechnology Applied to Animal Nutrition, Merida, Mexico.

Cuarón, I.J.A., Martínez, A.A.M.M., Zapata, L., Pradal, R.P., Velázquez, M.O. y Sierra, J. 1998. Uso de levadura en la producción de cerdos. Segundo seminario Microbiología aplicada a la Nutrición Animal. México, D.F.

Czop, J.K. 1986. Characterization of a phagocytic receptor for Beta-glucan on macrophages cultured from murine bone marrow. Path. Immunopath. Res. 5: 286-296.

Chang, M.H., Cheng, T.C. 2003. Reduction of Broiler House Malodor by Direct Feeding of a Lactobacilli Containing Probiotic International Journal of Poultry Science 2 (5): 313-317.

Chen, D. y Ainsworth, A.J. 1992. Glucan administration potentiates immune defense mechanisms of channel catfish, Ictalurus punctatus Rafinesque. J. Fish Dis. 15: 295-304.

Davis, M.E., Maxwell, C.V., Kegley, E.B., De Rodas, B.Z., Friesen, K.G., Hellwig, D.H. y Dvorak, R. A. 1999. Efficacy of mannan oligosaccharide (Bio-Mos) addition at two levels of supplemental copper on performance and immunocompetence of early weaned pigs. J. Anim. Sci. 77 (Suppl. 1): 63 (Abs.).

Davis, M. E., Brown, D.C., Maxwell, C.V., Johnson, Z.B. y Dvorak, R.A. 2001. Efficacy of mannan oligosaccharide (Bio- Mos) as a complete or partial replacement for zinc oxide in the diets of weanling pigs. J. Anim. Sci. 79 (Suppl. 2): 78

Davis, M.E., Maxwell, C.V., Brown, D.C., De Rodas, B.Z., Johnson, Z.B., Kegley, E.B., Hellwig, D.H. y Dvorak, R.A. 2002. Effect of dietary mannan oligosaccharides and (or) pharmacological additions of copper sulfate on growth performance and immunocompetence of weanling and growing/finishing pigs. J. Anim. Sci. 80: 2887–2894.

Davis, M.E., Maxwell, C.V., Erf, G.F., Brown, D.C. y Wistuba, T.J. 2004. Dietary supplementation with phosphorylated mannans improves growth response and modulates immune function of weanling pigs. J. Anim. Sci. 2004. 82: 1882–1891.

Dawson, K.A. 1994. Manipulation of microorganisms in the digestive tract: The role of oligosaccharides and diet specific yeast cultures. California Nutrition Conference for feed Manufacturers.

Di Luzio, N.R. 1977. Küpfer cells and other liver sinusoidal cells, Wise, E. and Knoch, D.L. (eds). Elsevier/North-Holland Biomedical Press, Amsterdam., pp: 397.

Doyle, M,E. 2001. Alternatives to Antibiotic Use for Growth Promotion in Animal Husbandry. Food Research Institute. Food Research Institute, FRI Briefings. University of Wisconsin. Madison, Wisconsin. April., pp: 1-17.

Ducluzeau, R. y Bensaada, M. 1982. Effets comparés de l’administration unique ou en continu de Saccharomyces boulardii sur l’établis¬sement de diverses souches de Candida dans le tractus digestif de souris gnotoxeniques. Ann Microbiol., 133B : 491-501.

Durand-Chaucheyras, F., Fonty, G., Bertin, G., Theveniot, M. y Gouet, P. 1998. Fate of Levucell S C I-1077 yeast additive during digestive transit in lambs. Reprod. Nutr. Dev., 38: 275-280.

Dvorak, R. y Jacques, K.A. 1998. Mannanoligosaccharide, fructooligosaccharide and Carbadox for pigs days 0-21 post-wea¬ning. J. Anim. Sci. 76 (Suppl. 2): 64 (Abs.).

El Hennawy, A.A., Tse Wong, C. y Kocoshis, S.A. 1994. Failure of Saccharomyces boulardii to hydrolyse bile acid in vitro. Microbios, 80: 23-29.

Elliot, D.A., Katcher, V.B. y Lowy, F.D. 1991. A 220-kilodalton Glycoprotein in yeast extract inhibits Staphylococcus aureus adherence to human endothelial cells. Infect. Immun., 59(6): 2222-2223.

FEDESA. 1999. Antibiotics for Animals. A F

Most read articles by the same author(s)