Ir al contenido principal Ir al menú de navegación principal Ir al pie de página del sitio

Aislamiento y caracterización de Metarhizium spp. de cultivos de caña de azúcar y su patogenicidad contra Mahanarva andigena (Hemiptera: Cercopidae)

Universidad Estatal Amazónica
Universidad Regional Amazónica Ikiam
Universidad Estatal Amazónica
Universidad Estatal Amazónica
Universidad Estatal Amazónica
conidia control biológico de plagas insecticida biológico plagas de plantas plagas azucareras

Resumen

Metarhizium anisopliae es uno de los hongos entomopatógenos más comercializados para la regulación de poblaciones de insectos plagas. Las cepas nativas de este hongo ejercen un importante rol en el control natural. Sin embargo, se desconoce su efectividad en condiciones amazónicas ecuatorianas. Es por ello que esta investigación tuvo como objetivos aislar y caracterizar cepas nativas de M. anisopliae con potencial para el control de Mahanarva andigena (Jacobi) en el cultivo de caña de azúcar (Saccharum officinarum L.). Se realizaron las colectas para el aislamiento y caracterización de los hongos, obteniendo un total de 20 aislados (quince de muestras de suelo y cinco de ninfas de M. andigena micosadas). Todos los aislados se caracterizaron con base en sus caracteres morfológicos y fisiológicos. En diez de ellos se evaluó la patogenicidad contra ninfas de M. andigena en condiciones de laboratorio. Los resultados obtenidos de la caracterización de los aislados fueron variables, tanto para el diámetro y tasa de crecimiento, como para el largo y ancho de conidios, germinación, esporulación y mortalidad corregida. El análisis de estas características demostró que los aislados DSA5401 y TI6301 presentaron los mejores valores para la mayoría de las variables evaluadas, en especial el diámetro, la tasa de crecimiento y la producción de conidios. Respecto a la efectividad en el control, los aislados DAS5401, TI6301, TS6304, PS5003, SJS5104 y SJS5102 presentaron una alta mortalidad corregida. Estos resultados indican la efectividad de aislados nativos de M. anisopliae para su uso en programas de control biológico de M. andigena.

Valle-Ramírez, S. B., R. Torres-Gutiérrez, W. O. Caicedo-Quinche, R. V. Abril-Saltos, y D. J. Sucoshañay-Villalba. «Aislamiento Y caracterización De Metarhizium Spp. De Cultivos De caña De Azúcar Y Su Patogenicidad Contra Mahanarva Andigena (Hemiptera: Cercopidae)». Ciencia &Amp; Tecnología Agropecuaria, vol. 23, n.º 1, enero de 2022, doi:10.21930/rcta.vol23_num1_art:2361.
  1. Abbott, W.S. (1925). A method of computing the effectiveness of an insecticide. Journal of Economic Entomology, 18(2), 265-267. https://doi.org/10.1093/jee/18.2.265a
  2. Abril, R., Yanez, Y., Villarroel, C., Idrovo, I., Caicedo, E., Vargas, M., Tapia, A., Valle, M. (2019). Influence of land use and geomorphology on the flow of the Pindo river, Ecuador. Journal of Environmental Hydrology, 27, 1-14. https://www.semanticscholar.org/paper/INFLUENCE-OF-LAND-USE-AND-GEOMORPHOLOGY-ON-THE-FLOW-Abril-Yanez/2b408e3cede4892dc91a9884b27ccbe7fea9cd05
  3. Barrios, C., Bustillo, A., Ocampo, K., Reina, M., & Alvarado, H. (2016). Eficacia de hongos entomopatógenos en el control de Leptopharsa gibbicarina (Hemiptera: Tingidae) en palma de aceite. Revista Colombiana de Entomología, 42(1), 22-27. http://www.scielo.org.co/pdf/rcen/v42n1/v42n1a05.pdf
  4. Bautista, E., Mesa, L., & Gómez, M. (2018). Alternativas de producción de bioplaguicidas microbianos a base de hongos: el caso de América Latina y El Caribe. Scientia Agropecuaria, 9(4), 585-604. http://dx.doi.org/10.17268/sci.agropecu.2018.04.15
  5. Bischoff, J., Rehner, S., & Humber, R. (2009). A multilocus phylogeny of the Metarhizium anisopliae lineage. Mycologia, 100(4), 512-530. https://doi.org/10.3852/07-202
  6. Cárdenas, Y., Márquez, M., Robaina, Y., Porras, A., Ulloa, Y., & Quesada, Y. (2016). Caracterización de aislados cubanos del complejo de especies Metarhizium anisopliae con actividad patogénica frente a Cylas formicarius Fabricius (Coleoptera: Brentidae). Revista Protección Vegetal, 31(1), 50-56. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1010-27522016000100007
  7. Castro, S.M., González, R., Castaño, J., & Sanjuán, T. (2013). Evaluación de medios de cultivo para inducir esporulación de Isaria tenuipes Peck. Revista Agronomía, 21(1), 19-25. http://agronomia.ucaldas.edu.co/downloads/Agronomia21(1)_3.pdf
  8. Centro de Investigación de la Caña de Azúcar del Ecuador [CINCAE]. (2013). Salivazo Mahanarva andigena (Jacobi) (Homóptera: Cercopidae). Área de investigación de manejo de plagas CINCAE. http://cincae.org/areas-de-investigacion/manejo-de-plagas/salivazo/
  9. Driver, F., Milner, R., & Trueman, J. (2000). A taxonomic revision of Metarhizium based on a phylogenetic analysis of rDNA sequence data. Mycological Research, 104(2), 134-150. https://doi.org/10.1017/S0953756299001756
  10. Ekesi, S., Maniania, N. K., & Ampo, N. K. (1999). Effect of temperature on germination, radial growth and virulence of Metarhizium anisopliae and Beauveria bassiana on Megalurothrips sjostedti. Biocontrol Science and Technology, 9(2), 177-185. https://www.semanticscholar.org/paper/Effect-of-Temperature-on-Germination%2C-Radial-Growth-Ekesi-Maniania/74ed0fe863974777cfd67ead8f526514cabcf8b0
  11. Erper, I., Saruhan, I., Akca, I., Aksoy, H. M., & Tuncer, C. (2016). Evaluation of some entomopathogenic fungi for controlling the green shield bug, Palomena prasina L. (Heteroptera: Pentatomidae). Egyptian Journal of Biological Pest Control, 26(3), 573-578. https://www.researchgate.net/publication/309486690_Evaluation_of_Some_Entomopathogenic_Fungi_for_Controlling_the_Green_Shield_Bug_Palomena_prasina_L_Heteroptera_Pentatomidae
  12. Estrada, M. N., Vélez, P. E., Montoya, E. C., & Bustillo, A. E. (1999). Esporulación, germinación y patogenicidad de aislamientos monoespóricos de Beauveria bassiana. Cenicafé, 50(1), 49-65. https://www.cenicafe.org/es/publications/arc050%2801%29049-065.pdf
  13. Faria, M., Lopes, R. B., Souza, D. A., & Wraight, S. P. (2015). Conidial vigor vs. viability as predictors of virulence of entomopathogenic fungi. Journal of Invertebrate Pathology, 125, 68-72. https://doi.org/10.1016/j.jip.2014.12.012
  14. Fernandes, E. K., Keyser, C. A., Chong, J. P., Rangel, D. E., Miller, M. P., & Roberts, D. W. (2010). Characterization of Metarhizium species and varieties based on molecular analysis, heat tolerance and cold activity. Journal of Applied Microbiology, 108, 115-128. https://sfamjournals.onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1111/j.1365-2672.2009.04422.x
  15. Freitas, A. F., Loureiro, E. S., Almeida, M. E., & Pessoa, L. G. (2012). Seleção de isolados de Metarhizium anisopliae (Metsch.) Sorok. (Deuteromycotina: Hyphomycetes) para o controle de Mahanarva fimbriolata (Stål, 1854) (Hemiptera:Cercopidae) em cana-de-açúcar. Arquivos do Instituto Biológico, 79(2), 247-254. https://www.scielo.br/j/aib/a/4RjKTGYmfLDrnSJjwRb68cc/?lang=pt
  16. García, I., Del Pozo, E., & Hernández, Y. (2019). Producción y conservación de conidios del aislado Ma-005 de Metarhizium anisopliae (Metsch.) Sorokin. Revista Centro Agrícola, 46(1), 5-12. http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0253-57852019000100005
  17. García, A., Bustillo, A., Castro, U., & Arenas, Y. (2012). Selección de hongos entomopatógenos para controlar salivazos (Hemiptera: Cercopidae) de la caña de azúcar en Colombia. Revista Colombiana de Entomología, 38(2), 252-259. http://www.scielo.org.co/pdf/rcen/v38n2/v38n2a15.pdf
  18. García, M., Cappello, S., Lesher, J., & Molina, R. (2011). Aislamiento y caracterización morfológica de los hongos entomopatógenos Beauveria bassiana y Metarhizium anisopliae. Horizonte Sanitario, 10(2), 21-28. https://www.redalyc.org/pdf/4578/457845138002.pdf
  19. García, N., Tlecuitl, S., Favela, E., & Loera, O. (2015). Production and quality of conidia by Metarhizium anisopliae var. lepidiotum: critical oxygen level and period of mycelium competence. Applied Microbiology and Biotechnology, 99, 2783-2791. https://doi.org/10.1007/s00253-014-6225-2
  20. García-Gutiérrez, C., García-Guajardo, I., Vejar-Cota, G., Meza-García, L., & Chávez-Medina J. (2020). Macromorfología y crecimiento radial de cepas de hongos entomopatógenos suplementado con polvo de lepidópteros. Revista Colombiana de Entomología, 46(1), e10164. http://www.scielo.org.co/pdf/rcen/v46n1/2665-4385-rcen-46-01-e10164.pdf
  21. Guigón-López, C., Guerrero-Prieto, V., Vargas-Alvores, F., Carvajal-Millán, E., Ávila-Quezada, G., Bravo-Luna, L., Ruocco, M., Lanzuise, S., Woo, S., & Lorito, M. (2010). Identificación molecular de cepas nativas de Trichoderma spp. su tasa de crecimiento in vitro y antagonismo contra hongos fitopatógenos. Revista Mexicana de Fitopatología, 28(2), 87-96. http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0185-33092010000200002
  22. Gürlek, S., Sevim, A., Sezgin, F., & Sevim, E. (2018). Isolation and characterization of Beauveria and Metarhizium spp. from walnut fields and their pathogenicity against the codling moth, Cydia pomonella (L.) (Lepidoptera: Tortricidae). Egyptian Journal of Biological Pest Control, 28, Article 50. https://doi.org/10.1186/s41938-018-0055-y
  23. Hernández-Domínguez, C., & Guzmán-Franco, A. (2017). Species diversity and population dynamics of entomopathogenic fungal species in the genus Metarhizium a spatiotemporal study. Microbial Ecology, 74, 194-206. https://doi.org/10.1007/s00248-017-0942-x
  24. Hernández-Domínguez, C., Guzmán-Franco, A. W., Carrillo-Benítez, M. G., Alatorre-Rosas, R., Rodríguez-Leyva, E., & Villanueva-Jiménez, J. A. (2016). Specific diversity of Metarhizium isolates infecting Aeneolamia spp. (Hemiptera: Cercopidae) in sugarcane plantations. Neotropical Entomology, 45(1), 80-87. https://doi.org/10.1007/s13744-015-0337-y
  25. Hu, X., Xiao, G., Zheng, P., Shang Y., Su, Y., Zhang, X., Liu, X., Zhan, S., St Leger, R. J., & Wang, C. (2014). Trajectory and genomic determinants of fungal-pathogen speciation and host adaptation. Proceedings of the National Academy of Sciences, 111(47), 16796-16801. https://doi.org/10.1073/pnas.1412662111
  26. Humber, R. A. (1997). Fungi: Identification. En L.A. Lacey (Ed.), Manual of techniques in insect pathology (1st ed., pp. 153-185). Academic Press. https://www.elsevier.com/books/manual-of-techniques-in-insect-pathology/lacey/978-0-12-432555-5
  27. Humber, R. A. (2012). Identification of entomopathogenic fungi. En L.A. Lacey (Ed.), Manual of Techniques in Invertebrate Pathology (2nd ed., pp. 151-187). Academic Press. https://www.elsevier.com/books/manual-of-techniques-in-invertebrate-pathology/lacey/978-0-12-386899-2
  28. Iwanicki, N., Pereira, A., Botelho, A., Rezende, J., Moral, A., Zucchi, M., & Júnior, I. (2019). Monitoring of the field application of Metarhizium anisopliae in Brazil revealed high molecular diversity of Metarhizium spp in insects, soil and sugarcane roots. Scientific Reports, 9, Article 4443. https://doi.org/10.1038/s41598-019-38594-8
  29. Lacey, L. A., Grzywacz, D., Shapiro-Ilan, D. I., Frutos, R., Brownbridge, M., & Goettel, M. S. (2015). Insect pathogens as biological control agents: Back to the future. Journal of Invertebrate Pathology, 132, 1-41. https://doi.org/10.1016/j.jip.2015.07.009
  30. Mendoza, J., Gualle, D., & Gómez, P. (2013). Plagas potenciales: Una amenaza para el cultivo de la caña de azúcar en Ecuador [Ponencia]. III Congreso AETA (Asociación Ecuatoriana de Técnicos Azucareros), Guayaquil, Ecuador. http://www.aeta.org.ec/pdf/campo/Mendoza%20J.,%20Gualle%20D.,%20Gomez%20P.%20Plagas%20potenciales%20....pdf
  31. Rezende, J., Zanardo, A., Lopes, S., Delalibera, I., & Rehner, S. (2015). Phylogenetic diversity of Brazilian Metarhizium associated with sugarcane agriculture. BioControl, 60, 495-505. https://doi.org/10.1007/s10526-015-9656-5
  32. Schapovaloff, M. E., Alves, A. Luis, F., Urrutia, M., & López, C. C. (2015). Ocurrencia natural de hongos entomopatógenos en suelos cultivados con yerba mate (Ilex paraguariensis St. Hil.) en Misiones, Argentina. Revista Argentina de Microbiología, 47(2), 138-142. https://www.redalyc.org/pdf/2130/213039768010.pdf
  33. Sevim, A., Demir, I., Höfte, M., Humber, R. A., & Demirbağ, Z. (2010). Isolation and characterization of entomopathogenic fungi from hazelnut-growing region of Turkey. Biocontrol, 55, 279-297. https://doi.org/10.1007/s10526-009-9235-8
  34. Steinwender, B., Enkerli, J., Widmer, F., Eilenberg, J., Kristensen, K., & Meyling, N. (2014). Molecular diversity of the entomopathogenic fungal Metarhizium community within an agroecosystem. Journal of Invertebrate Pathology, 123, 6-12. https://doi.org/10.1016/j.jip.2014.09.002
  35. Tiago, P., Leao, M., Malosso, E., Oliveira, N., & Lima, E. (2012). Persistence and effect of Metarhizium anisopliae in the fungal community of sugarcane soil. BioControl, 57, 653-661. https://doi.org/10.1007/s10526-012-9445-3
  36. Torres de la C. M., Cortez, M. H., Ortiz, G. C. F., Cappello, G. S., & De La Cruz, P. A. (2013). Caracterización de aislamientos nativos de Metarhizium anisopliae y su patogenicidad hacia Aeneolamia postica, en Tabasco, México. Revista Colombiana de Entomología, 39(1), 40-46. http://www.scielo.org.co/pdf/rcen/v39n1/v39n1a07.pdf
  37. Ummidi, V.R.S., Josyula, U., & Vadlamani, P. (2013). Germination rates of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae its possible correlation with virulence against Spodoptera litura larvae. International Journal of Advanced Research, 2(1), 625-630. https://www.journalijar.com/uploads/853_IJAR-2538.pdf
  38. Valle, S., Iparraguirre, M., Caicedo, W., Díaz, L., Uvidia, H., & Carrera, K. (2018). Evaluación del ciclo de vida del salivazo Mahanarva andigena sobre plántulas de caña de azúcar. Revista Amazónica y Ciencia y Tecnología, 7(1), 19-26. https://docplayer.es/139995797-Revista-amazonica-ciencia-y-tecnologia.html
  39. Vélez, A. P. E., Posada, F. F. J., Marín, P., González, G. M. T., Osorio, V. E., & Bustillo, P. A. E. (1997). Técnicas para el control de calidad de formulaciones de hongos entomopatógenos [Boletín Técnico Cenicafé N.º 17]. Cenicafé. https://biblioteca.cenicafe.org/handle/10778/709

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Métricas

455 | 305




 

Creative Commons License Creative Commons License

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.

Derechos de autor 2021 Ciencia & Tecnología Agropecuaria