Frecuencias alélicas para variantes SNP en el gen Nramp1 en bovinos infectados con Brucella abortus o clasificados por resistencia al patógeno

Publicado
2009-06-28
Sección
Recursos genéticos animales

Palabras clave

Brucelosis; Resistencia A Enfermedades; Blanco Orejinegro; Cebú; Genótipo
  • Fernando Cerquera M.
  • Rodrigo Martínez S. CORPOICA
  • Rubén Toro O. Vecol, Bogotá.
  • Jaime Tobón C. CORPOICA
  • Jaime Gallego G. CORPOICA
  • Esperanza Rueda C.I. Ceisa, Instituto Colombiano Agropecuario ICA, Bogotá.

Resumen

La resistencia natural a la brucelosis en bovinos ha sido asociada a factores genéticos, principalmente a algunos polimorfismos de nucleótido simple ubicados dentro del gen Nramp1. La presente investigación evalúa el efecto de variantes tipo polimorfismos de nucleótido simple presentes en regiones codificantes y en la región 3’UTR del gen Nramp1, en la clasificación de los animales como resistentes o susceptibles; además se determinan los genotipos predominantes en animales naturalmente infectados y comprobados como positivos por la presencia de anticuerpos anti Brucella abortus. Se establecieron las frecuencias genotípicas y alélicas para cinco polimorfismos de nucleótido simple identificados dentro del gen Nramp1 en animales de las razas blanco orejinegro (Bos taurus taurus) y cebú (Bos taurus indicus) y en muestras serológicamente positivas provenientes de animales cruzados (Bos taurus x Bos indicus). La determinación de genotipos se realizó mediante la metodología polimorfismo conformacional de cadena sencilla. Se realizó un ensayo de desafío infeccioso in vitro, para estimar la capacidad de los macrófagos bovinos para controlar la sobrevivencia bacterial, lo que permitió definir los individuos como resistentes o susceptibles. Los resultados sugieren una asociación significativa del SNP4 (p = 0,0506) con la variación para el fenotipo de susceptibilidad, pues se encontró el genotipo homocigoto (BB) en alta frecuencia en animales catalogados como resistentes y el genotipo heterocigoto (AB) en alta frecuencia en animales catalogados como susceptibles y en animales con títulos de anticuerpos anti Brucella abortus.  

 

 

Descargas

No hay datos de descargas disponibles

Biografía del autor

Fernando Cerquera M.
Licenciado en Biología. Bogotá.
Rodrigo Martínez S., CORPOICA

Z. Ph.D. Grupo de Recursos Genéticos y Biotecnología Animal, C.I. Tibaitatá, Mosquera.

Rubén Toro O., Vecol, Bogotá.
MV. M.Sc.
Jaime Tobón C., CORPOICA

MV. Grupo de Recursos Genéticos y Biotecnología Animal, E.E. El Nus, San Roque, Antioquia.

Jaime Gallego G., CORPOICA

MV. Grupo de Recursos Genéticos y Biotecnología Animal, E.E. El Nus, San Roque, Antioquia.

Esperanza Rueda, C.I. Ceisa, Instituto Colombiano Agropecuario ICA, Bogotá.
MV. M.Sc.
¿Cómo citar?
CERQUERA M., Fernando et al. Frecuencias alélicas para variantes SNP en el gen Nramp1 en bovinos infectados con Brucella abortus o clasificados por resistencia al patógeno. Corpoica Ciencia y Tecnología Agropecuaria, [S.l.], v. 10, n. 1, p. 43-50, june 2009. ISSN 2500-5308. Disponible en: <http://revista.corpoica.org.co/index.php/revista/article/view/127>. Fecha de acceso: 23 oct. 2017 doi: https://doi.org/10.21930/rcta.vol10_num1_art:127.

Citas

Ables P, Takamatsu D, Noma H, Shazly S, Jin H, Taniguchi T, Sekikawa K, Watanabe T. 2001. The roles of Nramp1 and Tnfa genes in nitric oxide production and their effect on the growth of Salmonella typhimurium in macrophages from Nramp1 congenic and tumor necrosis factor-/ mice. Journal of Interferon & Cytokine Research 21(1):53-62.

Ables P, Nishibori M, Kanemaki M, Watanabe T. 2002. Sequence analysis of the Nramp1 genes from different bovine and buffalo breeds. Journal of Veterinary Medical Science 64(11):1081-1083.

Barthel R, Feng J, Piedrahíta J, MacMurray D, Templeton J, Adams G. 2001. Stable transfection of the bovine Nramp1 Gene into murine RAW264.7 Cells: effects on Brucella abortus survival. Infection and immunity 69(5): 3110-3119.

Bellamy R. 1999. The natural resistance- associated macrophage protein and susceptibility to intracellular pathogens. Microbes and Infection 1(1): 23-27.

Borriello G, Capparelli R, Bianco M, Fenizia D, Alfano F, Capuano F, Ercolini D, Parisi A, Roperto S, Iannelli D. 2006. Genetic resistance to Brucella abortus in water buffalo (Bubalus bubalis). Infection and Immunity 74(4):2115-2120.

Barroso A, Dunner S, Cañón J. (1997) Use of a single strand conformation polymorphism analysis to perform a simple genotyping of bovine kcasein A and B Variants. Journal of Dairy Research 64(4): 535–540.

Capparelli R, Alfano R, Grazia M, Borriello G, Fenizia D, Bianco A, Roperto S, Roperto F, Iannelli D. 2007. Protective Effect of the Nramp1 BB Genotype against Brucella abortus in the Water Buffalo (Bubalus bubalis). Infection and immunity 75(2): 988-996.

Coussens M, Coussens J, Tooker B, Nobis W. 2004. Structure of the bovine natural resistance associated macrophage protein (Nramp 1) gene and identification of a novel polymorphism. DNA Sequence 15(1): 15-25.

Feng J, Li Y, Hashad M, Schurr E, Gros P, Adams LG, Templeton JW. 1996. Bovine natural resistance associated macrophage protein (Nramp1) gene. Genome Research. 6: 956-964.

Gruneheid S., Pinner E., Desjardins M., Gross P. 1997. Natural resistance to infection with intracellular pathogens: The SLC11A1 protein is a recruit to the membrane of phagosome. Journal of Experimental Medicine 185(4): 717-730.

Horín P, Rychlik I, Templeton JW, Adams GL. 1999. A complex pattern of microsatellite polymorphism within the bovine NRAMP1 gene. European Journal of Inmunogenetics 26:311-313.

Harmon BG, Adams LG, Templeton JW, Smith R. 1989. Macrophage function in mammary glands of Brucella abortus-infected cows and cows that resisted infection after inoculation of Brucella abortus. American Journal of Veterinary Research. 50(4): 459-465.

ICA. Grupo de Control y Erradicación de Riesgos Zoosanitarios. 2002. Boletín divulgativo.

Kumar N, Mitra A, Ganguly I, Singh R, Deb S, Srivastava K, Sharma A. 2005. Lack of association of brucellosis resistance with (GT)13 microsatellite allele at 3′UTR of Nramp1 gene in Indian zebu (Bos indicus) and crossbred (Bos indicus × Bos taurus) cattle. Veterinary Microbiology 111(1-2): 139-143.

Lehman E. 1974. Nonparametrics: Statistical Methods Based on Ranks. San Francisco, Holden-Day, 457 p.

López A, Saldarriaga O, Ossa Jorge, Arango A. 2001. Ganado blanco orejinegro: una alternativa para la producción en Colombia. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias 14(2): 119-126.

Male M. 2003. Infectious Diseases. Immunology 3. Open University Worldwide Eds. New York. pp. 149.

Martínez R, Toro R, Montoya, Burbano M, Tobón J, Gallego J, Ariza F. 2005. Evaluación Genética para resistencia a brucelosis en ganado criollo colombiano blanco orejinegro. Archivos de Zootecnia 54(206- 207): 333-340.

Martínez R, Dunner S, Barrera G, Cañón J. 2008 a. Identificación de polimorfismos en la región codificante del gen Nramp1 en varias razas de ganado Bos taurus y Bos indicus. Journal of Animal Breeding and Genetics.125: 57-62.

Martínez R, Toro R, Montoya F, Burbano M, Tobón J, Gallego J, Dunner S, Cañón J. 2008 b. Bovine SLC11A1 3’UTR SSCP genotype evaluated by a macrophage in vitro killing assay employing a Brucella abortus strain. Journal of Animal Breeding and Genetics... 125(4): 1-9.

Martínez R. 2008. Resistencia genética a brucelosis en ganado bovino criollo colombiano blanco orejinegro y cebú brahman. Universidad Complutense de Madrid, Facultad de Veterinaria, Programa de doctorado.

Paixao T, Ferreira C, Borges A, Oliveira D, Lage A, Santos R. 2005. Frequency of bovine Nramp1 alleles in Holstein and Zebu breeds. Veterinary Immunology and Immunopathology 109(1-2): 37-42.

Paixao T, Poester F, Carvalho A, Borges A, Lage A, Santos R. 2007. Nramp1 3 Untranslated Region Polymorphisms Are Not Associated with Natural Resistance to Brucella abortus in Cattle. Infection and Immunity 75(5): 2493-2499.

Price RE, Templenton JW, Smith R, Adams LG. 1990. Ability of mononuclear phagocytes from cattle naturally resistant or susceptible to brucellosis to control in vitro intracellular survival of Brucella abortus. Infection and Immunity 58(4): 879-886.

Qureshi T, Templeton JW, Adams LG. 1996. Intracellular survival of Brucella abortus, Mycobacterium bovis BCG, Salmonella serovar Dublin, and Salmonella typhimurium in macrophages from cattle genetically resistant to Brucella abortus. Veterinary Immunology and Immunopathology 50:55-65

Rodríguez EF, Crespo F. 2002. La brucelosis. En: Zoonosis, II Curso sobre enfermedades transmisibles entre los animales y el hombre. Facultad de Veterinaria, Universidad de León, León, España, pp. 437-510.

Sambrook J, Fritsc F, Maniatis T. 1989. Molecular Cloning. A Laboratory Manual. Second edition. Cold spring Harbor Laboratory Pres. P 917.

Templeton JW, Estes DM, Price RE, Smith R, Adams G. 1990. Immunogenetics of natural resistance to bovine brucellosis, Proceedings of the 4th world congress on genetics applied to livestock production, Edinburgh, 23-27 July 1990.

Vidal S, Gros P, Skamene E. 1995. Natural resistance to infection with intracellular parasites: molecular genetics identifies Nramp1 as the Bcg/ity/Lsh locus. Journal of Leukocyte Biology. 58: 382-390.

Wyckoff JH. 2002. Bovine T lymphocyte responses to Brucella abortus. Veterinary Microbiology 90(1): 395-415.

Wigley P. 2004. Genetic resistance to Salmonella infection in domestic animals. Research in Veterinary Science 76(3): 165-169.

Most read articles by the same author(s)